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FAQ-ELISA

ELISA相关问题

1. Q:竞争ELISA、双抗夹心ELISA、间接ELISA

A竞争ELISA

特点:包被抗体,标记抗原,样本中的抗原与酶标抗原竞争与固体抗体结合,标本中抗原量含量越多,结合在固相上的酶标抗原越少,最后的显色也越浅。

缺点:整体的敏感性和专一性都较差。

用途:小分子抗原或者半抗原的定量检测,当抗原材料中干扰物质不易去除或不易得到足够的纯化抗原时,多用于此方法检测;一般小分子激素及药物常用此法测定。

双抗夹心ELISA

特点:使用两个特异性单抗或者1个特异性单抗和1个特异性多抗,固相载体包被抗体,酶标记特异性抗体作为检测抗体。

优点:使用两个特异性抗体检测,特异性好。

缺点:成本高。

用途:用于抗原的定量检测。

间接ELISA

特点:固相载体包被抗原,酶标记二抗,主要用于测抗体。

优点:使用酶标二抗增加了灵敏度,灵活度大,成本低。

缺点:交叉反应几率升高。

用途:通过检测血清中的抗体来检测病毒,如第12代艾滋病诊断试剂。最常用于免疫动物血清中抗体含量的测定。

2. Q:为什么推荐双波长检测(450nm630nm)。

AELISA实验终止后形成的是黄色物质,该物质需要在450nm处测定其吸光度,630nm的吸光度只是检测板子本身的吸光度,与酶标板的材质有关,测OD630可以消除各个板孔不干净等非特异性因素引起的误差。如果所使用的酶标仪不可以检测OD630也没有关系,只读取OD450的结果也可以。

数据处理时所用的矫正值,是把所有孔的OD值减去标准曲线0浓度孔的OD值,进一步计算结果。

3. QCV值指的是什么

ACV值是统计学中的一个概念,中文是变异系数,可以认为变异系数和极差、标准差和方差一样,都是反映数据离散程度的绝对值。CV值越小,说明数据的波动程度越小。在描述板内、板间实验结果是否一致时常用到CV值,其越小,说明批内及批间差越小,试剂盒质量越好。

4. Q:标曲拟合方式。

AELISA数据处理中所谓的“标准曲线”其实称为拟合曲线比较合适。标准曲线的拟合方式有多种,直线、二次曲线、三次曲线、指数、对数等虽都可用于ELISA及其它生物学反应中的曲线拟合,但都只适用于曲线的一部分,有的适用于前半段,有的适用于后半段,有的适用于中间一段,而四参数Logistic曲线拟合则对曲线的全部都有较好的适用性。目前国际上最流行的免疫检测拟合方式是“四参数Logistic拟合",用这种拟合方式往往能够比较精确的反映浓度和吸光度的曲线关系,从而进一步比较正确地获得样品中待测物质的浓度值。

建议用专门的软件进行数据处理,这样可以快速、准确地计算出结果。

5. Q:明确标明种属的试剂盒可以用来检测其他种属的样本么?

AELISA试剂盒严格区分种属,一般不推荐跨种属检测,不同种属的同一个指标同源性相差可能会很大,抗体的特异性要求比较高,不同种属样本与抗体结合能力会有很大差别。

6. QELISA试剂盒只能检测血清、血清、细胞上清液么?

A:通常我们可用于ELISA检测的样本是有多种类型的,可以是血清、血浆、细胞上清等常规样品,也可以是尿液、细组织匀浆液、细胞裂解液等,不同类型的检测样本前期的处理方法是不一样的。样品中含有影响生物活性的物质会影响检测结果。

7. Q:试剂盒中的酶标板是包被好的么?

A:剂盒中提供的包被板已经包被过检测抗体,可以直接使用。进行ELISA实验时仅限使用本试剂盒中的组分,不能使用别的板条进行实验。96孔酶标板是可拆的,每条8孔。可以根据自己的实验取出部分板条使用,剩余的酶标板放回含有干燥剂的铝箔袋中,4度保存,不会影响酶标板性能。若拆封的酶标板没有正确储存,导致板子受潮,可能会影响检测结果。用过的板条不可重复使用。

8. Q:试剂盒在使用前要室温放置30min ,目的是什么?

AELISA试剂盒对于温度的要求比较严格,温度是ELISA结合反应的重要影响因素,这样做主要是为了使试剂温度一致,在后面的温育反应步骤中,能使反应微孔内的温度能较快地达到所要求的高度,以满足测定要求。

9. Q:试剂盒保存温度是多少度?为什么说明书上写的标准品是-20度,标签上写的是4度呢?

A:试剂盒保存温度是4度,说明书中只有标准品标注的保存温度是-20度,由于标准品是冻干的重组蛋白,-20度保存会延长重组蛋白的保存期限。试剂盒的有效期是6个月,冻干的重组蛋白能够在4度保存6个月,但是如果有条件或者想更长时间保存,还是建议能够将标准品-20度保存。

10. Q:样本收集后不能及时检测低温保存可以放多久?

A:样本收集后24之内进行检测,放在4度冰箱即可。如果样本收集后不能立即检测,需将样本置于低温冰箱中,样本3个月内检测可于-20度保存,若存放时间更久,需要用-80度冰箱保存。

11. Q:样品反复冻融影响大么?

A:样品反复冻融对蛋白影响非常大,能导致蛋白降解,非常不建议反复冻融样品。一般蛋白含量丰富的样本例如血清/血浆反复冻融1-2次,对于检测结果影响不是非常大,但是其他类型的样本,例如细胞上清液、肺泡灌洗液,反复冻融会使蛋白降解严重,对检测结果影响非常大。

12. Q:生物素化抗体和酶结合物,稀释后没用完,还可以再用吗?

A:稀释后的生物素化抗体和酶结合物建议在当天用完,放置时间太长可能会影响其活性。可根据自己实验所需用量进行配制,不建议过量配制。

13. Q:变异系数(CV)较大的原因?

A

可能原因

参考解决方案

孔中有气泡

加样小心,避免读数前产生气泡

孔板洗涤不均/不彻底

确保每次洗涤达到要求,按建议洗涤

试剂混合不充分

确保试剂已充分混合

加样量不一样

使用校准好的移液器确保每孔加样量一致

边缘效应

试剂盒提前恢复室温,保证所有试剂温度一致

样品制备/保存不一致

确保始终如一的样品,避免不同批次/保存条件造成的差异

14. Q:标准曲线较差?

A

可能原因

参考解决方案

标准品稀释不当

确认是否正确稀释

标准品复溶不当

标准品复溶前短暂离心,确保是否完全溶解

标准品降解

确认保存方式及存放时间

曲线和标度不适合

尝试不同的拟合方式

边缘效应

试剂盒提前恢复室温,保证所有试剂温度一致

移液出错

使用校准好的移液器和正确的移液方法

标准品有污染

小心操作,避免污染

错误的孵育时间或温度

按照说明书的流程中操作

15. Q:高背景或阴性对照值偏高

A

可能原因

参考解决方案

洗板不充分

将洗涤液注入反应孔充分洗涤,彻底拍干孔中液体

酶结合物过量

检查酶稀释度,按说明书标识的稀释度稀释

底物污染

加底物前检查底物是否为透明无色,请勿用变蓝的底物,重新用新的底物试验

阴性对照孔被阳性对照污染

注意洗涤时不要把洗液溢出孔外,不使阴阳对照孔液体涟接一起

不同批次试剂混用

检查试剂批号,请勿用不同批次试剂

终止后太长时间读数

终止后应立即读数

16. Q:显色信号弱

A

可能原因

参考解决方案

试剂过期

检查试剂盒有效期,请勿用过期试剂

孵育时间过短

按说明书中规定的时间孵育

试剂污染

检查试剂是否污染,请勿用污染的试剂

酶标仪滤光片不匹配

检查酶标仪设置及滤光片是否匹配

试剂盒平衡不充分

确保试剂盒试验前平衡至室温

显色时间不够

增加底物显色时间

17. Q:无显色信号

A

可能原因

参考解决方案

检测抗体、酶、或显色剂漏加

检查试验操作流程,重复试验

酶被叠氮钠污染

请使用重新配制的试剂

试剂添加顺序有误

检查复核试验添加顺序、流程,重复试验

波长不正确

核实检测波长

18. Q:标曲佳但样品孔无信号

A

可能原因

参考解决方案

样品中靶标物含量低或样品中无靶标物

设置阳性对照,重复实验

样品基质效应影响检测

重新稀释样品后复测

标曲选择不合适

更换拟合方式,选最合适的拟合方式

样本含量低于灵敏度

浓缩样本或更换灵敏度更高的试剂盒

 


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